XPJ的实验原理是通过脂类染料（如苏丹黑或油红O等）对血清脂蛋白进行预染，然后将预染的血清置于琼脂糖凝胶板进行电泳分离。在电流作用下，脂蛋白向正极移动并被分离成多个区带。

试剂与器材

1. 巴比缓冲液（pH 8.6，离子强度 0.075）：作为电极缓冲液，配制时需要154克巴比/妥钠，276克巴比/妥，0.292克EDTA，溶解后加水至1000毫升。

2. 三羟甲基氨基甲烷缓冲液（pH 8.6）：用作凝胶缓冲液，配置时需121.2克三羟甲基氨基甲烷，0.29克EDTA，15.85克NaCl，溶解后也加水至1000毫升。

3. 琼脂糖凝胶：将0.45克琼脂糖与50毫升三羟甲基氨基甲烷缓冲液和50毫升水混合后加热至沸腾，待琼脂糖完全溶解后立即停止加热。

4. 制作切口刀：刀口长度为15毫米，中间夹一有机玻璃或木片，并用螺丝固定以保持刀片间距15毫米。挖槽小匙使用直径15毫米、长度约6厘米的铜丝制成，一端锤成扁平并用砂纸磨光。

5. 电泳槽和电泳仪：与血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳所需的设备相同。

操作步骤

1. 预染血清：将0.2毫升血清与0.2毫升苏丹黑染色液混合在小试管中，放在37℃水浴中染色30分钟，然后以2000转/分离心约5分钟。

2. 制备琼脂糖凝胶板：将已配制的0.45%琼脂糖凝胶在沸水浴中加热融化，用吸管吸取凝胶液滴入载玻片，每片约25毫升。静置约半小时后凝固（高温环境下可能需要延长时间，有必要可放入冰箱加速凝固）。

3. 点加血清：在凝固的琼脂糖凝胶板一端约2厘米处用切口刀垂直切入，取出刀片后，用铜丝小匙挖去长条凝胶。用小片滤纸吸干小槽内部的水分，然后用血色素吸管吸取已预染的血清约15微升，注入凝胶板的小槽内。

4. 电泳：将含血清的凝胶板平行放置于电泳槽中，样品端应靠近阴极。将两块纱布浸润于巴比/妥缓冲液中，轻轻贴在凝胶板两端，纱布的另一端浸在电泳槽中的缓冲液中（切忌用三羟甲基氨基甲烷缓冲液替代）。接通电源，电压设定为120~130V，每片电流为3~4mA。经过约15至55分钟后，可观察到分离的色带。

注意事项

1. 电泳样品需使用新鲜的空腹血清。

2. 每块凝胶上可平行挖两个小槽，便于添加两个样品。

3. 若使用与小槽形状大小相同的有机玻璃片，在琼脂糖凝胶固化前固定在适当位置，凝固后取出有机玻璃片，凝胶板上将保留小槽，无需挖槽。

4. 若需保留电泳样本，可将电泳后的凝胶板（连同载玻片）放入清水中浸泡脱盐2小时，再置于烘箱（约80℃）烘干。

结果及临床意义

1. 正常人血清脂蛋白可显示三条区带：从负极到正极依次为β-脂蛋白（最深）、前β-脂蛋白（最浅）、α-脂蛋白（稍深于前β-脂蛋白），原点处应无乳糜微粒。

2. 若前β-脂蛋白比α-脂蛋白深，结合血清甘油三酯明显升高且胆固醇正常或略高，可判定为Ⅳ型高脂蛋白血症。

3. 若β-脂蛋白区带明显加深且血清总胆固醇增高、甘油三酯正常，属Ⅱa型；若血清总胆固醇增高而前β-脂蛋白略溶解，则为Ⅱb型。

4. 当β-和前β-两区带连在一起，称为“宽β区带”，且结合血清甘油三酯和胆固醇均增高，可定为Ⅲ型。

5. 若原点出现乳糜微粒，而β-和前β-均正常或减低，结合血清甘油三酯显著升高，可判定为Ⅰ型。

请注意，XPJ所售产品仅供科研实验使用，切勿用于临床！